动物组织基因组DNA提取试剂盒
产品及特点
本试剂盒适用于动物组织等基因组 DNA 的提取。试剂盒采用了独特的细胞裂解体系降解蛋白，结合硅胶膜特异吸附核酸的原理，可快速纯化得到高质量的基因组DNA。使用本试剂盒得到的基因组 DNA 无蛋白、核酸酶污染，可直接进行PCR、酶切和杂交等相关分子生物学实验。
它具有下列特点：
1. 简便快速，可快速获得高纯度的基因组 DNA；
2. 重复性好，产量高；
3. 完全去除污染物和抑制剂，便于下游应用。
成分规格
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Buffer GTL
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12ml
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25ml
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50ml
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Buffer GL
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12ml
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25ml
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50ml
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Buffer EB
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10ml
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10ml
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30ml
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Buffer W1（concentrate）
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13ml
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26ml
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52ml
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Buffer W2（concentrate）
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15ml
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30ml
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60ml
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Proteinase K
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1ml
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2×1ml
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4×1ml
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Spin Column with Collection Tubes
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50套
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100套
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200套
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蛋白酶 K 于-20℃, 其他组分室温（15 - 25℃) , 可保存 12 个月
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本产品仅供科研使用，不得用于其它用途
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使用方法
自备试剂
无水乙醇、RNase A（可选）。
（注 意：Buffer W1 和 Buffer W2 为浓缩液，按要求加入无水乙醇，用后及时盖紧，以防乙醇挥发）
1. 称取 20 mg 动物组织（脾组织用量应少 10 mg），先打碎处理为细胞悬液，然后10,000rpm(-11,200×g)离心 1 min，倒尽上清，加 200 μl Buffer GTL，振荡至彻底悬浮。如果没有匀浆仪，也可将组织切成细小碎块，加 200 μl Buffer GTL。
（注 意：如果需要去除 RNA，可加入 4 μl RNase A（100 mg/ml）溶液（客户自备），振荡15 sec，室温放置 5 min。）
2. 加入 20 μl Proteinase K 溶液，充分混匀，在 56℃水浴或金属浴直至组织完全溶解。（注意：不同组织裂解时间不同，通常需 1 - 3 h 即可完成（鼠尾需要消化过夜，不会影响后续操作。）每小时颠倒混合样品 2 - 3 次，用水浴或金属浴振荡器也可）
3. 加入 200 μl Buffer GL，充分混匀，70℃水浴或金属浴处理10 min，期间每隔一段时间震荡离心管，溶液变得清亮后短暂离心，以去除管盖内壁的水珠。
（注 意：Buffer GL 加入时可能会产生白色沉淀，一般 70℃时会消失，不影响后续实验，如溶液未变清亮，说明细胞裂解不彻底，可能导致提取的DNA量少或者提取的DNA不纯）
4. 加入 200 μl 无水乙醇，充分震荡，此时可能会出现絮状沉淀，短暂离心以去除管盖内壁水珠。
5. 将所得溶液和絮状沉淀转移到离心吸附柱中，12,000 rpm 离心30 sec，弃收集管中的滤液。
6. 向吸附柱内加入 500 μl Buffer W1，室温 12,000 rpm 离心30 sec，弃收集管中滤液。（注 意：Buffer W1为浓缩液按要求加入无水乙醇，用后应立即盖紧瓶盖，以防酒精挥发）
7. 向吸附柱内加入 600 μl Buffer W2，室温 12,000 rpm 离心30 sec，弃收集管中滤液。（注 意：Buffer W2为浓缩液，按要求加入无水乙醇，用后应立即盖紧瓶盖以防酒精挥发）
8. 向吸附柱内加入 500 μl Buffer W2，室温 12,000 rpm 离心30 sec，弃收集管中滤液。
9. 干燥。将离心吸附柱于 12,000 rpm 离心 2 min，甩干残留漂洗液。
（注 意：此步不能省略，否则残留乙醇会影响质粒的后续使用）|
10. 将离心吸附柱置于一个新的 1.5 ml 塑料离心管（自备）中，加入50 - 100 μl Buffer EB，室温放置 2 min。12,000 rpm 离心 1 min，离心管底溶液即基因组DNA。
（注 意：为增加洗脱效率，可将洗脱液在 60℃预热。如需使用去离子水洗脱，可用NaOH调整其pH值在 7.0 - 8.5 之间，为了增加基因组 DNA 回收率，可将得到的溶液重新加入到离心管中，室温放置2 min，再次离心收集）
注意事项
1. 如 Buffer GTL 和 Buffer GL产生沉淀 ，可在 56℃水浴溶解。
2. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段小，提取量下降。
3. 所有离心步骤均为台式离心机，室温下操作。
